Analiza przydatności metod oznaczania adenozynotrifosforanu (ATP) oraz mikroskopii fluorescencyjnej do oceny żywotności i adhezji bakterii na powierzchni bioaktywnych polimerów

B. Gutarowska; M. Piotrowska; Z. Żakowska; K. Gwoździński

Data publikacji : 2012-03-30

Tom 57 Nr 3 (2012)

Analiza przydatności metod oznaczania adenozynotrifosforanu (ATP) oraz mikroskopii fluorescencyjnej do oceny żywotności i adhezji bakterii na powierzchni bioaktywnych polimerów

B. Gutarowska M. Piotrowska Z. Żakowska K. Gwoździński

Abstrakt

Analizowano przydatność metod mikroskopii fluorescencyjnej oraz oznaczania ATP do oceny aktywności przeciwdrobnoustrojowej bioaktywnych polimerów. Stwierdzono iż stosowanie jednocześnie obu metod daje pełną informację na temat adhezji do powierzchni polimerów i żywotności komórek bakterii. Porównanie mniej czaso- i pracochłonnej metody oznaczania ATP z metodą hodowlaną wskazuje, iż dają one porównywalne wyniki dotyczące żywotności komórek. Zależności między zawartością ATP a liczbą bakterii na polimerze oznaczoną metodą hodowlaną można opisać, z wysokim stopniem korelacji, funkcją wykładniczą lub liniową. Odpowiednie przygotowanie powierzchni próbek bioaktywnych polimerów (zawierających nośniki dla biocydów), umożliwiające uzyskanie gładkiej ich powierzchni, zmniejsza błąd powtarzalności obu testowanych metod. W przypadku polimeru kontrolnego (bez dodatków) błąd powtarzalności był niewielki (rzędu kilku %), w przypadku zaś polimerów z nośnikami błąd zwiększa się do poziomu kilkudziesięciu % (47 % i 73 %). Ocena żywotności i adhezji sześciu gatunków bakterii na bioaktywnych polimerach wykazała statystycznie istotne różnice w działaniu ograniczającym adhezję i żywotność: na polimerze z miedzią bakterii E. coli oraz na polimerze ze srebrem bakterii S. aureus. B. cepacia okazała się bakterią silnie przylegającą do polimerów bioaktywnych, ale jej żywotność skutecznie ograniczała obecność srebra w polimerze.

Słowa kluczowe

oznaczanie ATP ; mikroskopia fluorescencyjna ; bioaktywne polimery ze srebrem lub miedzią ; aktywność przeciwbakteryjna ATP assay ; fluorescence microscopy ; bioactive polymers with silver or copper ; antimicrobial activity

Szczegóły

Bibliografia

Wskaźniki

Autorzy

Pobierz pliki

PDF

Zasady cytowania

Gutarowska, B., Piotrowska, M., Żakowska, Z., & Gwoździński, K. (2012). Analiza przydatności metod oznaczania adenozynotrifosforanu (ATP) oraz mikroskopii fluorescencyjnej do oceny żywotności i adhezji bakterii na powierzchni bioaktywnych polimerów. Polimery, 57(3), 236–245. Pobrano z https://polimery.ichp.vot.pl/index.php/p/article/view/823

Bibliografia

Lazarowa V., Manem J.: Water Res. 1995, 29(10), 2227.

2. Yuehuei H. An., Friedman R. J.: J. Microbiol. Methods 1997, 30(2), 141.

3. Schultz C. L., Pezzutti M. R., Silor D., White R.: J. Ind. Microbiol. 1995, 15, 243.

4. Lundin A.: w „ATP luminescence rapid methods in microbiology” (red. Stanley P. E., McCarthy B. J., Smither R.), Blackwell Scientific Publications, London 1989, str. 11—27.

5. Żakowska Z., Stobińska H.: „Mikrobiologia i higiena w przemyśle spożywczym”, Wyd. Politechnika £ódzka, £ódź 2000.

6. Czaczyk K., Powałowski Sz.: Przemysł Spożywczy 2001, 12, 12.

7. Szczotko M., Krogulska B., Rogulski A.: Roczniki Państwowego Zakładu Higieny 2008, 59(1), 103.

8. Ludwicka A., Switalski L. M., Lundin A., Pulverer G.: J. Microbiol. Methods 1985, 4(3—4), 169.

9. Humphries M., Jaworzyn J. F., Cantwell J. B.: FEMS Microbiol. Lett. 1986, 38(5), 299.

10. Flint S. H., Brookes J. D., Brehmer P. J.: J. Food Eng. 2000, 43, 235.

11. Mikš M. H.,Warmińska-Radyko I.: Medycyna Weterynaryjna 2008, 5, 623.

12. Paulsson M., Kober M., Freij-Larsson C., Stollenwerk M., Wesslen B., Ljungh A.: Biomaterials 1993, 14(11), 845.

13. Yuehuei H. An., Friedman R. J., Draughn R. A., Smith E. A., Nicholson J. H., John J. F.: J. Microbiol. Methods 1995, 24(1), 29.

14. O’Mahony R., Basset Ch., Holton J., Vaira D., Roitt I:. J. Microbiol. Methods 2005, 61(1), 105.

15. Czermiński J. B., Inaszkiewicz A., Paszek Z., Sikorski A.: „Metody statystyczne dla chemików”, Wyd. Nauk. PWN, Warszawa 1992.

16. Kala R.: „Statystyka dla przyrodników”,Wyd. Akad. Rolniczej, Poznań 2002.

17. Andrews Ch. S., Denyer S. P., Hall B., Hanlon G. W., Lloyd A. W.: Biomaterials 2001, 22, 3225.

18. Czaczyk K., Myszka K.: Pol. J. Env. Stud. 2007, 16(6), 799.

19. Yoon K.-Y., Byeon J. H., Park J.-H., Hwang J.: Sci. Total Env. 2007, 373, 572.

20. Hwang M. G., Katayama H., Ohgaki S.: Water Res. 2007, 41, 4097.

21. Ruparelia J. P., Chatterjee A. K., Duttagupta S. P., Mukherji S.: Acta Biomaterialia 2008, 4, 707.

22. Silver S.: FEMS Microbiol. Rev. 2003, 27, 341.

23. Myszka K., Czaczyk K.: Curr. Microbiol. 2009, 58(6), 541.

24. Teughels W., Van A. N., Sliepen I., Quirynen M.: Clin. Oral Implant Res. 2006, 17, 68.

25. Bürgers R., Eidt A., Frakenberger R., Rosentritt M., Schweikl H., Handel G., Hahnel S.: Arch. Oral Biol. 2009, 54, 595.

Google Scholar

Cytowania w Google Scholar

Statystyki

Total abstract views : 0

PDF Downloads : 0

B. Gutarowska polimery@ichp.pl

M. Piotrowska

Z. Żakowska

K. Gwoździński